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ProteanFect Max 轉(zhuǎn)染試劑盒:提供免疫細胞高效、低毒性的核酸轉(zhuǎn)染解決方案

更新時間:2025-01-20

閱讀:1452

產(chǎn)品名稱:ProteanFect Max 轉(zhuǎn)染試劑盒
規(guī)格:多種規(guī)格可選
簡介:ProteanFect Max 轉(zhuǎn)染試劑盒是全·球首·款自組裝蛋白納米顆粒核酸轉(zhuǎn)染試劑,專為原代細胞與難轉(zhuǎn)細胞系設(shè)計,能夠?qū)崿F(xiàn)卓·越的外源基因遞送與表達。作為一種非病毒、非電轉(zhuǎn)、非脂質(zhì)體的轉(zhuǎn)染試劑,ProteanFect Max 能高效且低毒性地轉(zhuǎn)染 mRNA、siRNA、DNA 等多種核酸。該試劑操作簡便,僅需 5-15 分鐘即可將核酸遞送至細胞內(nèi),最快在 1 小時內(nèi)觀察到 mRNA 的表達效果。·
產(chǎn)品特點與優(yōu)勢:
  • 高效轉(zhuǎn)染:能夠高效轉(zhuǎn)染 mRNA、siRNA、DNA 等多種核酸,適用于多種細胞類型。
  • 低毒性:對細胞的損傷小,轉(zhuǎn)染后細胞狀態(tài)恢復(fù)快。
  • 操作簡便:僅需 5-15 分鐘即可完成轉(zhuǎn)染,最快 1 小時內(nèi)觀察到 mRNA 表達。
  • 適用廣泛:適用于原代細胞和難轉(zhuǎn)細胞系,如人原代 T 細胞、Jurkat T 細胞、HepG2 細胞等。
  • 陽性對照:試劑盒包含編碼綠色熒光蛋白(EGFP)的 mRNA 和質(zhì)粒 DNA,驗證實驗操作及試劑效果。
產(chǎn)品應(yīng)用:
  • 基因表達研究:快速高效地將目標(biāo)基因遞送至細胞內(nèi),觀察基因表達效果。
  • RNA干擾研究:通過 siRNA 轉(zhuǎn)染實現(xiàn)基因沉默,研究基因功能。
  • 細胞功能研究:在原代細胞和細胞系中進行功能研究,如細胞增殖、凋亡、遷移等。
儲存與運輸條件:
  • 儲存條件:Reagent A 和 Reagent C 打開使用后保存于 2-8℃,Reagent B 保存于 -20℃,避免反復(fù)凍融。
  • 運輸條件:干冰運輸,收到后應(yīng)存放于 -20℃,直至使用。
實驗前材料準備:
  • 待轉(zhuǎn)染細胞:轉(zhuǎn)染前細胞必須處于良好的生長狀態(tài),活率>90%。對于原代細胞,建議在適當(dāng)活化后進行轉(zhuǎn)染。
  • 推薦培養(yǎng)基:Opti-MEM 培養(yǎng)基(或無血清的 RPMI 1640 培養(yǎng)基/無血清 DMEM 培養(yǎng)基),提前預(yù)熱或恢復(fù)至室溫。
  • 其他:完·全培養(yǎng)基,無菌 EP 管、所需轉(zhuǎn)染的核酸樣品。
實驗操作步驟:
  1. 配置 ProteanFect 轉(zhuǎn)染體系
    • 在 40 µL Reagent A 中加入 0.5 µg mRNA,充分混勻。
    • 加入 1.4 μL Reagent B,輕柔充分混勻。
    • 對于原代細胞,加入 8 μL Reagent C 混勻。
  2. 細胞處理
    • 懸浮細胞:300 g 離心 5 分鐘,收集細胞沉淀,用 Opti-MEM 重懸并洗滌,調(diào)至 5×10? - 1×10? cells/mL 備用。
    • 貼壁細胞:轉(zhuǎn)染前匯合率應(yīng)保持在 50%-80%,用 Opti-MEM 輕柔清洗細胞兩次,加入 20 µL Opti-MEM 備用。
  3. 細胞轉(zhuǎn)染
    • 將配置好的 ProteanFect 轉(zhuǎn)染體系與 20 µL 細胞懸液或貼壁細胞混合均勻。
    • 37℃孵育 45-60 分鐘(細胞系)或 15-30 分鐘(原代細胞)。
    • 加入至少 200 µL 完·全培養(yǎng)基,300 g 離心 5 分鐘,棄上清(為避免細胞損失,無需完·全棄盡);對于貼壁細胞,直接棄去混合液,補加培養(yǎng)基。
    • 加入適量完·全培養(yǎng)基,進行細胞培養(yǎng),后續(xù)可根據(jù)實驗?zāi)康倪M行基因表達檢測。
常見問題及解決方案:
  1. 如何提升轉(zhuǎn)染效率
    • 延長轉(zhuǎn)染時間:根據(jù)細胞狀態(tài)適當(dāng)延長轉(zhuǎn)染時間。通常原代細胞不超過 1 小時,細胞系不超過 2 小時。
    • 提升 Reagent B 用量:適當(dāng)增加 Reagent B 的用量,以 96 孔板為例,原代細胞推薦為 0.7-1.4 μL,細胞系為 1-3 μL。
    • 提升 Reagent C 用量:對于細胞系轉(zhuǎn)染,可在體系中添加適當(dāng)?shù)?Reagent C,以 96 孔板為例,添加 8-13.5 μL,孵育 15 分鐘,最長不超過 45 分鐘;原代細胞則可將 Reagent C 體積增加至 13.5 μL,孵育時間同樣不超過 45 分鐘。
    • 提升 ProteanFect 轉(zhuǎn)染量:適當(dāng)增加轉(zhuǎn)染體系至初始的 1.5-2.5 倍。
  2. 質(zhì)粒 DNA 能否用于原代細胞轉(zhuǎn)染
    • 雙鏈 DNA 轉(zhuǎn)染原代細胞可能引起一定的毒性,例如炎癥應(yīng)激,因此需根據(jù)實驗?zāi)康闹斏鬟x擇。以人或小鼠來源的原代 T 細胞為例,使用質(zhì)粒 DNA 轉(zhuǎn)染可能導(dǎo)致顯著的細胞毒性,因此不適合此類細胞。而大多細胞系通常經(jīng)過多代培養(yǎng),能更有效地應(yīng)對外源 DNA 帶來的壓力,對雙鏈 DNA 轉(zhuǎn)染的耐受性較高,因此可以使用質(zhì)粒 DNA 進行轉(zhuǎn)染。
  3. 質(zhì)粒 DNA 轉(zhuǎn)染要求
    • 轉(zhuǎn)染效率受 DNA 質(zhì)量影響。建議使用無內(nèi)毒素試劑盒制備 DNA,并確保 OD 值在 1.7-1.9 之間;使用無核酸酶純水將 DNA 稀釋至 0.5-2 µg/µL 的濃度。
  4. 細胞系轉(zhuǎn)染前處理
    • 為獲得良好的轉(zhuǎn)染效率,建議使用活性超過 90%的細胞,可以通過臺盼藍染色測定細胞活性。
    • 不建議使用傳代次數(shù)超過 15 次的細胞進行實驗。
    • 新復(fù)蘇的細胞在轉(zhuǎn)染實驗前需傳代 2-3 次,待細胞恢復(fù)正常生長后使用。
  5. 原代細胞轉(zhuǎn)染前預(yù)處理
    • 對于原代細胞,充分活化有助于提高轉(zhuǎn)染效率,因此建議在適當(dāng)活化后進行轉(zhuǎn)染。例如,人原代 T 細胞可使用 CD3/CD28 磁珠或抗體進行激活,激活 2-10 天內(nèi)均可轉(zhuǎn)染,其中激活 4-6 天時轉(zhuǎn)染效率zui高。
  6. 關(guān)于試劑盒中陽性對照的使用建議
    • 首·次嘗試時,建議設(shè)置陽性對照組(EGFP mRNA 或 EGFP pDNA),以檢測實驗操作和試劑的有效性。使用 96 孔板的細胞量即可,節(jié)省細胞和試劑。
  7. 轉(zhuǎn)染時的細胞數(shù)范圍
    • 說明書中提供了最佳轉(zhuǎn)染條件下的細胞數(shù)量范圍,但在特殊情況下,即使細胞數(shù)量較少,也可以進行轉(zhuǎn)染。以 96 孔板為例,建議細胞數(shù)量不低于 4×103/孔,以確保后續(xù)檢測的可靠性。
  8. 轉(zhuǎn)染后細胞狀態(tài)與活力
    • 轉(zhuǎn)染后,細胞狀態(tài)可能與未處理組略有差異。但使用 ProteanFect 試劑進行轉(zhuǎn)染時,對細胞活力的損傷較小。通常在轉(zhuǎn)染后第二天,細胞狀態(tài)會基本恢復(fù)。
  9. 轉(zhuǎn)染后細胞離心后看不到沉淀
    • 對于小體積轉(zhuǎn)染體系(如 96 孔板),離心后細胞沉淀不明顯是正常現(xiàn)象。細胞沉淀可能散落在離心管側(cè)壁,不影響后續(xù)結(jié)果。為減少細胞損失,離心后移液時應(yīng)避免槍頭緊貼底部。
  10. 轉(zhuǎn)染體系擴大是否影響轉(zhuǎn)染效率
    • 如轉(zhuǎn)染細胞量較大,推薦使用離心管進行孵育,轉(zhuǎn)染體系參照表 4,不會影響轉(zhuǎn)染效率。
  11. 貼壁細胞如何轉(zhuǎn)染
    • 對于貼壁細胞,可提前一天種板后進行轉(zhuǎn)染,也可消化成細胞懸液進行


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